標本作製法

ショ糖入り保存液5～10ｍｌで穿刺を洗浄する。全量をオ－トスメアで遠心塗抹（１５００ｒｐｍ、５分間）。直ちにＭＰ固定液でコーティング固定し、半日～１日室温乾燥。９５％エタノールで１５分間再固定後染色。

　ショ糖入り保存液作成法：２％ショ糖入り0.01mol-PBS(pH7.4 0.1mol-PBS 100ml + NaCl 8.5g + 水1L + ショ糖2%)、この溶液２に対し、１００％エタノール　１の割合で混合し冷蔵保存。
*核染は５０％希釈のヘマトキシリン液を使用する。保存液及び検体は冷蔵保存する。

採用理由

検体を受託するため操作が簡便で、検体及び保存液とも安定性が求められる。（穿刺施行から標本作製まで半日～３日程度経過する）
細胞乾燥による判定不能を防ぐため。

長所：細胞の保全性が高く、数日経過しても変化しない。細胞が剥がれにくい。医療機関のスタッフによる不慣れな操作でも、標本の乾燥が防げる。立体構造がやや強調されるため構造異型を読むのに有利。微細顆粒状のクロマチン構造を読み取りやすい。

短所：保存液作製に手間が掛かる。細胞及び核が濃縮する傾向がある。筋上皮細胞と上皮細胞との鑑別が困難な場合がある。ギムザ染色は不適。